这种肠道细菌促进结肠息肉癌变，可作为癌症预测指标
来源：医生在线
时间：2021/09/23 17:14
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结直肠癌（CRC）是一种常见的癌症，它始于一种称为息肉的癌前病变。结肠直肠息肉是由结肠上皮内层的增殖与凋亡障碍引起的。管状腺瘤性息肉（TAP）和无蒂锯齿状息肉（SSP）是两种具有较高恶性潜能的癌前病变，它们的外观和分子特征明显不同。迄今为止，还没有研究报道TAP和SSP病变之间的微生物群的组成和功能差异。
我们的肠道中定殖了超过1000种细菌，它们组成了肠道微生物群，也是人类身体健康的基础之一。肠道微生物群的改变与结直肠息肉有关。某些细菌已被确定为可能的致癌驱动因素，这些细菌通过毒力机制促进肿瘤发展，表明细菌的慢性感染和炎症有助于肿瘤的发生和发展。
该研究发现脆弱拟杆菌与息肉附近粘膜中炎性细胞因子的水平之间存在相关性。来自息肉患者的脆弱拟杆菌通过Toll样受体4刺激NF-κB，诱导促炎反应，并富含与LPS生物合成相关的基因。该研究通过突出菌株特异性基因组和蛋白质组差异，以及微生物组中更广泛的组成差异，证明了脆弱拟杆菌促进结肠息肉的癌变，可以作为结直肠癌的风险预测指标。
研究团队招募了40名接受常规结肠镜检查的患者。患者年龄在50至75岁之间，其中2/3是女性。活检息肉的组织学分析显示，51%的患者患有管状腺瘤性息肉（TAP），23%患有无蒂锯齿状息肉（SSP），13%患有良性增生性息肉（HP），剩余的13%没有病变，被作为健康对照。
肠道炎症与肠道微生物群组成的变化有关。因此，研究团队通过16SrRNA测序分析了一部分患者近端结肠的粘膜微生物群，看看这是否可以解释在宿主组织中观察到的表型差异。正如预期的那样，他们发现与息肉相关的微生物群的组成不同于健康组织。其中TAP组织主要包含拟杆菌，SSP组织以变形菌为主，健康对照活检中主要包含厚壁菌。
由于对息肉微生物组的研究很少，因此将细菌培养与基质辅助激光解吸电离飞行时间质谱（MALDITOFMS）结合的培养组学使他们能够评估和比较在组间细菌的组成与功能。当与16S测序鉴定的细菌相比时，他们发现培养组学分析出更多的拟杆菌，这些细菌主要来自TAP患者的组织，然后是SSP，是健康对照。对拟杆菌属的分析表明，拟杆菌中分别超过80%和60%是来自TAP或SSP的脆弱拟杆菌，健康对照中只有不到20%的脆弱拟杆菌。
除了可以通过TLR2检测到的多糖和脂蛋白外，脆弱拟杆菌还产生一种独特的LPS，已被证明与TLR4弱结合。使用TLR4/MD2和NF-κB依赖性萤火虫荧光素酶报告基因转染的细胞，与来自健康对照患者的细菌分离物相比，来自息肉患者的脆弱拟杆菌能够在更大程度上显着刺激TLR4。蛋白质组学差异解释了TLR4的不同刺激并导致TAP和SSP脆弱拟杆菌的促炎表型。与PF分离株相比，息肉患者分离株中显着富集编码参与LPS生物合成的糖基转移酶的基因。已有研究报道TLR4将LPS识别为微生物配体并且LPS可以通过TLR4发出信号以诱导IL-12p40和IL-1β，LPS生物合成的差异很可能解释了脆弱拟杆菌分离株之间观察到的表型差异。此外，与健康对照粘膜组织相比，TAP和SSP组织切片中的LPS染色更强。
综上所述，这项工作表明癌前结肠息肉微环境富含刺激TLR4而不是TLR2的脆弱拟杆菌，导致促炎细胞因子的诱导。在息肉形成的早期阶段，发炎的肠道微环境允许富含LPS生物合成基因的脆弱拟杆菌进行定植。这些细菌通过TLR4刺激NF-kB并诱导炎症，直接促进结肠肿瘤的生长。这项研究的发现为微生物群诱导结直肠癌能力的潜在机制提供了基本见解，并且在发现潜在的基于微生物群的结直肠癌诊断和治疗靶点方面向前迈进了一步。
该研究发现脆弱拟杆菌与息肉附近粘膜中炎性细胞因子的水平之间存在相关性。来自息肉患者的脆弱拟杆菌通过Toll样受体4刺激NF-κB，诱导促炎反应，并富含与LPS生物合成相关的基因。该研究通过突出菌株特异性基因组和蛋白质组差异，以及微生物组中更广泛的组成差异，证明了脆弱拟杆菌促进结肠息肉的癌变，可以作为结直肠癌的风险预测指标。
研究团队招募了40名接受常规结肠镜检查的患者。患者年龄在50至75岁之间，其中2/3是女性。活检息肉的组织学分析显示，51%的患者患有管状腺瘤性息肉（TAP），23%患有无蒂锯齿状息肉（SSP），13%患有良性增生性息肉（HP），剩余的13%没有病变，被作为健康对照。
肠道炎症与肠道微生物群组成的变化有关。因此，研究团队通过16SrRNA测序分析了一部分患者近端结肠的粘膜微生物群，看看这是否可以解释在宿主组织中观察到的表型差异。正如预期的那样，他们发现与息肉相关的微生物群的组成不同于健康组织。其中TAP组织主要包含拟杆菌，SSP组织以变形菌为主，健康对照活检中主要包含厚壁菌。
由于对息肉微生物组的研究很少，因此将细菌培养与基质辅助激光解吸电离飞行时间质谱（MALDITOFMS）结合的培养组学使他们能够评估和比较在组间细菌的组成与功能。当与16S测序鉴定的细菌相比时，他们发现培养组学分析出更多的拟杆菌，这些细菌主要来自TAP患者的组织，然后是SSP，是健康对照。对拟杆菌属的分析表明，拟杆菌中分别超过80%和60%是来自TAP或SSP的脆弱拟杆菌，健康对照中只有不到20%的脆弱拟杆菌。
除了可以通过TLR2检测到的多糖和脂蛋白外，脆弱拟杆菌还产生一种独特的LPS，已被证明与TLR4弱结合。使用TLR4/MD2和NF-κB依赖性萤火虫荧光素酶报告基因转染的细胞，与来自健康对照患者的细菌分离物相比，来自息肉患者的脆弱拟杆菌能够在更大程度上显着刺激TLR4。蛋白质组学差异解释了TLR4的不同刺激并导致TAP和SSP脆弱拟杆菌的促炎表型。与PF分离株相比，息肉患者分离株中显着富集编码参与LPS生物合成的糖基转移酶的基因。已有研究报道TLR4将LPS识别为微生物配体并且LPS可以通过TLR4发出信号以诱导IL-12p40和IL-1β，LPS生物合成的差异很可能解释了脆弱拟杆菌分离株之间观察到的表型差异。此外，与健康对照粘膜组织相比，TAP和SSP组织切片中的LPS染色更强。
综上所述，这项工作表明癌前结肠息肉微环境富含刺激TLR4而不是TLR2的脆弱拟杆菌，导致促炎细胞因子的诱导。在息肉形成的早期阶段，发炎的肠道微环境允许富含LPS生物合成基因的脆弱拟杆菌进行定植。这些细菌通过TLR4刺激NF-kB并诱导炎症，直接促进结肠肿瘤的生长。这项研究的发现为微生物群诱导结直肠癌能力的潜在机制提供了基本见解，并且在发现潜在的基于微生物群的结直肠癌诊断和治疗靶点方面向前迈进了一步。
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